إذن، لماذا تُكوّن عينات المصل المجمعة بشكل طبيعي (بدون إضافات أو مع مُخثِّر) جلطات فيبرين في المختبر، لكنها لا تتحلل لتوليد كمية كبيرة من نواتج تحلل الفيبرين (FDP) وD-dimer؟ يعتمد ذلك على نوع أنبوب المصل. ما يحدث بعد جمع العينة: أولًا، لا تدخل كمية كبيرة من مُنشِّط البلازمينوجين النسيجي (tPA) إلى الدم؛ ثانيًا، حتى لو دخلت كمية صغيرة من tPA إلى الدم، فإن tPA الحر سيرتبط بـ PAI-1 ويفقد فعاليته في غضون 5 دقائق تقريبًا قبل أن يرتبط بالفيبرين. في هذه الحالة، غالبًا لا يتكون الفيبرين في أنبوب المصل بدون إضافات أو مع مُخثِّر. يستغرق تخثر الدم بدون إضافات أكثر من 10 دقائق بشكل طبيعي، بينما يبدأ تخثر الدم مع مُخثِّر (عادةً مسحوق السيليكون) داخليًا. كما يستغرق تكوين الفيبرين من مسار تخثر الدم أكثر من 5 دقائق. بالإضافة إلى ذلك، تتأثر فعالية تحلل الفيبرين في درجة حرارة الغرفة في المختبر.

لنتحدث مجددًا عن تخطيط مرونة الخثرة في سياق هذا الموضوع: من الواضح أن جلطة الدم في أنبوب المصل لا تتحلل بسهولة، ومن المفهوم أيضًا أن اختبار تخطيط مرونة الخثرة (TEG) ليس حساسًا بما يكفي لرصد فرط انحلال الفيبرين - كلا الحالتين متشابهتان، وبالطبع، يمكن الحفاظ على درجة الحرارة أثناء اختبار TEG عند 37 درجة مئوية. إذا كان TEG أكثر حساسية لرصد حالة انحلال الفيبرين، فإن إحدى الطرق هي إضافة tPA إلى تجربة TEG المخبرية، ولكن لا تزال هناك مشاكل في التوحيد القياسي، ولا يوجد تطبيق عالمي؛ بالإضافة إلى ذلك، يمكن قياسه بجانب سرير المريض مباشرة بعد أخذ العينة، ولكن التأثير الفعلي محدود للغاية. يُعد اختبار زمن ذوبان اليوجلوبولين اختبارًا تقليديًا وأكثر فعالية لتقييم نشاط انحلال الفيبرين، ويعود ذلك إلى حساسيته العالية مقارنةً بـ TEG. في هذا الاختبار، تتم إزالة مضاد البلازمين عن طريق ضبط قيمة الرقم الهيدروجيني والطرد المركزي، لكن الاختبار يستغرق وقتاً طويلاً وهو قاسٍ نسبياً، ونادراً ما يتم إجراؤه في المختبرات.