Das automatisierte Blutrheologie-Analysegerät SA-6900 arbeitet im Kegel-Platte-Messmodus. Ein drehmomentarmer Motor erzeugt eine kontrollierte Scherspannung in der zu messenden Flüssigkeit. Die Antriebswelle wird durch ein reibungsarmes Magnetlager zentriert und überträgt die Scherspannung auf die Messflüssigkeit. Der Messkopf ist vom Typ Kegel-Platte. Die gesamte Messung wird computergesteuert. Die Scherrate ist im Bereich von 1 bis 200 s⁻¹ frei einstellbar. Das Gerät zeichnet Scherrate und Viskosität in Echtzeit als zweidimensionale Kurven auf. Das Messprinzip basiert auf dem Newtonschen Viskositätstheorem.
| Modell | SA-6900 |
| Prinzip | Vollblut: Rotationsmethode; |
| Plasma: Rotationsmethode, Kapillarmethode | |
| Verfahren | Kegel-Platte-Verfahren |
| Kapillarmethode | |
| Signalerfassung | Kegelplattenverfahren: Hochpräzise Rasterunterteilungstechnologie; Kapillarverfahren: Differenzielle Erfassungstechnologie mit automatischer Flüssigkeitsnachführungsfunktion |
| Arbeitsmodus | Doppelsonden, Doppelplatten und zwei Methoden arbeiten gleichzeitig |
| Funktion | / |
| Genauigkeit | ≤±1% |
| CV | CV≤1% |
| Testzeit | Vollblut ≤ 30 Sek./T |
| Plasma≤0,5 Sek./T | |
| Schergeschwindigkeit | (1～200)s-1 |
| Viskosität | (0～60) mPa·s |
| Scherspannung | (0-12000) mPa |
| Probenahmevolumen | Vollblut: 200–800 µl (einstellbar), Plasma ≤ 200 µl |
| Mechanismus | Titanlegierung, Lagerstein |
| Probenposition | 90 Probenpositionen mit einem einzelnen Rack |
| Testkanal | 2 |
| Flüssigkeitssystem | Doppelte Peristaltikpumpe, Sonde mit Flüssigkeitssensor und automatischer Plasmatrennfunktion |
| Schnittstelle | RS-232/485/USB |
| Temperatur | 37℃±0,1℃ |
| Kontrolle | LJ-Regelkarte mit Speicher-, Abfrage- und Druckfunktion; |
| Originale Steuerung nicht-newtonscher Flüssigkeiten mit SFDA-Zertifizierung. | |
| Kalibrierung | Newtonsche Flüssigkeit, kalibriert anhand einer nationalen Primärviskositätsflüssigkeit; |
| Nicht-Newtonsche Flüssigkeiten erhalten die nationale Standard-Markenzertifizierung von AQSIQ in China. | |
| Bericht | Offen |
1. Auswahl und Dosierung des Antikoagulans
1.1 Auswahl des Antikoagulans: Heparin wird als Antikoagulans empfohlen. Oxalat oder Natriumcitrat können eine feine Zellschrumpfung verursachen, die die Aggregation und Verformbarkeit der roten Blutkörperchen beeinträchtigt und somit die Blutviskosität erhöht. Daher sind sie nicht geeignet.
1.1.2 Dosierung des Antikoagulans: Die Heparin-Konzentration beträgt 10–20 IE/ml Blut. Als Antikoagulans wird eine feste oder hochkonzentrierte flüssige Phase verwendet. Bei direkter Anwendung des flüssigen Antikoagulans ist dessen Verdünnungseffekt auf das Blut zu berücksichtigen. Die Versuche sollten mit derselben Charge durchgeführt werden.
Verwenden Sie dasselbe Antikoagulans mit derselben Chargennummer.
1.3 Herstellung des Antikoagulansröhrchens: Wenn flüssiges Antikoagulans verwendet wird, sollte es in ein trockenes Glasröhrchen oder eine Glasflasche gefüllt und im Ofen getrocknet werden. Nach dem Trocknen sollte die Trocknungstemperatur auf höchstens 56 °C kontrolliert werden.
Hinweis: Die Menge des Antikoagulans sollte nicht zu groß sein, um den Verdünnungseffekt auf das Blut zu minimieren; die Menge des Antikoagulans sollte aber auch nicht zu klein sein, da sonst keine gerinnungshemmende Wirkung eintritt.
2. Probenentnahme
2.1 Zeitpunkt: Im Allgemeinen sollte die Blutentnahme früh morgens auf nüchternen Magen und in Ruhe erfolgen.
2.2 Ort: Nehmen Sie bei der Blutentnahme eine sitzende Position ein und entnehmen Sie das Blut aus der Vene an der Vorderseite des Ellenbogens.
2.3 Verkürzen Sie die venöse Blockzeit während der Blutentnahme so weit wie möglich. Nachdem die Nadel in das Blutgefäß eingeführt wurde, lockern Sie die Manschette sofort und warten Sie etwa 5 Sekunden, bevor Sie mit der Blutentnahme beginnen.
2.4 Die Blutentnahme sollte nicht zu schnell erfolgen, um mögliche Schäden an den roten Blutkörperchen durch Scherkräfte zu vermeiden. Hierfür ist ein Lanzetten-Innendurchmesser von Vorteil (idealerweise eine Nadel mit einem Durchmesser von mindestens 7 Gauge). Es ist nicht ratsam, während der Blutentnahme zu viel Druck auszuüben, um unnatürliche Scherkräfte beim Durchfließen des Blutes durch die Nadel zu vermeiden.
2.2.5 Probenmischung: Nach der Blutentnahme die Injektionsnadel abschrauben und das Blut langsam entlang der Wand des Reagenzglases in das Reagenzglas spritzen. Anschließend das Reagenzglas in der Mitte mit der Hand festhalten und es in kreisenden Bewegungen auf dem Tisch reiben oder schieben, um das Blut vollständig mit dem Antikoagulans zu vermischen.
Um Blutgerinnsel zu vermeiden, sollte man jedoch starkes Schütteln vermeiden, um eine Hämolyse zu verhindern.
3. Herstellung von Plasma
Die Plasmaaufbereitung erfolgt nach klinischen Routineverfahren, die Zentrifugalkraft beträgt etwa 2300×g für 30 Minuten, und die obere Blutschicht wird als Pulpe abgetrennt, um die Plasmaviskosität zu messen.
4. Probenplatzierung
4.1 Lagertemperatur: Proben dürfen nicht unter 0 °C gelagert werden. Unter Gefrierbedingungen wird der physiologische Zustand des Blutes beeinträchtigt.
Zustand und rheologische Eigenschaften. Daher werden Blutproben im Allgemeinen bei Raumtemperatur (15 °C–25 °C) gelagert.
4.2 Wartezeit: Die Probe wird in der Regel innerhalb von 4 Stunden bei Raumtemperatur untersucht. Wird das Blut jedoch sofort nach der Entnahme entnommen, ist das Testergebnis ungenau. Daher empfiehlt es sich, die Probe nach der Entnahme 20 Minuten stehen zu lassen.
4.3 Proben dürfen nicht eingefroren und unter 0 °C gelagert werden. Wenn Blutproben unter besonderen Umständen länger aufbewahrt werden müssen, sind sie entsprechend zu kennzeichnen. Die Lagerung im Kühlschrank bei 4 °C ist in der Regel auf maximal 12 Stunden zu beschränken. Vor der Untersuchung sind die Proben sachgemäß zu lagern und gut zu schütteln. Die Lagerbedingungen sind im Ergebnisbericht anzugeben.
Visitenkarte
Chinesisches WeChat