Автоматизированный анализатор реологии крови SA-6900 использует конусно-пластинчатый режим измерения. Прибор создает контролируемое напряжение на измеряемую жидкость с помощью двигателя с низким инерционным моментом. Приводной вал удерживается в центральном положении низкоомным магнитным подшипником левитации, который передает создаваемое напряжение на измеряемую жидкость, а измерительная головка имеет конусно-пластинчатый тип. Все измерения автоматически контролируются компьютером. Скорость сдвига может быть установлена произвольно в диапазоне (1–200) с⁻¹, и позволяет строить двумерные кривые зависимости скорости сдвига от вязкости в реальном времени. Принцип измерения основан на теореме Ньютона о вязкости.
| Модель | СА-6900 |
| Принцип | Цельная кровь: метод ротации; |
| Плазма: метод вращения, капиллярный метод. | |
| Метод | Метод конусной пластины |
| капиллярный метод | |
| Сбор сигналов | Метод конусной пластины: высокоточная технология растрового подразделения. Капиллярный метод: технология дифференциального захвата с функцией автоматического отслеживания жидкости. |
| Режим работы | Использование двух зондов, двух пластин и двух методик одновременно. |
| Функция | / |
| Точность | ≤±1% |
| CV | CV≤1% |
| Время тестирования | Цельная кровь ≤30 сек/Т, |
| плазма≤0,5 сек/Т | |
| Скорость сдвига | (1–200) с⁻¹ |
| Вязкость | (0–60) мПа·с |
| Касательное напряжение | (0-12000) мПа |
| Объем пробы | Цельная кровь: 200-800 мкл (регулируемый объем), плазма ≤200 мкл. |
| Механизм | Титановый сплав, подшипник скольжения |
| Примерная позиция | 90 позиций для образцов с одной стойкой |
| Тестовый канал | 2 |
| Жидкостная система | Двойной перистальтический насос с функцией сжатия, зонд с датчиком жидкости и функцией автоматического разделения плазмы. |
| Интерфейс | RS-232/485/USB |
| Температура | 37℃±0,1℃ |
| Контроль | Диаграмма управления LJ с функциями сохранения, запроса и печати; |
| Оригинальная система управления неньютоновскими жидкостями, сертифицированная SFDA. | |
| Калибровка | Ньютоновская жидкость, откалиброванная с помощью национальной эталонной жидкости с заданной вязкостью; |
| Неньютоновская жидкость получила национальный сертификат соответствия стандартам качества от AQSIQ Китая. | |
| Отчет | Открыть |
1. Выбор и дозировка антикоагулянта
1.1 Выбор антикоагулянта: В качестве антикоагулянта целесообразно выбирать гепарин. Оксалат или цитрат натрия могут вызывать усадку мелких клеток, влияя на агрегацию и деформируемость эритроцитов, что приводит к повышению вязкости крови, поэтому их применение нецелесообразно.
1.1.2 Дозировка антикоагулянта: концентрация гепарина составляет 10-20 МЕ/мл крови, в качестве антикоагулянта используется твердая фаза или высококонцентрированная жидкая фаза. При непосредственном применении жидкого антикоагулянта следует учитывать его разбавляющее действие на кровь. Следует проводить одинаковые серии испытаний.
Используйте один и тот же антикоагулянт с тем же номером партии.
1.3 Изготовление пробирки с антикоагулянтом: если используется жидкий антикоагулянт, его следует поместить в сухую стеклянную пробирку или стеклянную бутылку и высушить в печи. После сушки температуру сушки следует поддерживать на уровне не выше 56 °C.
Примечание: Количество антикоагулянта не должно быть слишком большим, чтобы минимизировать эффект разбавления крови; количество антикоагулянта не должно быть слишком малым, иначе антикоагулянтный эффект будет отсутствовать.
2. Сбор образцов
2.1 Время: Как правило, забор крови следует проводить рано утром натощак и в спокойном состоянии.
2.2 Место взятия крови: При взятии крови сядьте и возьмите кровь из передней локтевой вены.
2.3 Максимально сократите время венозной блокады во время забора крови. После того, как игла войдет в кровеносный сосуд, немедленно ослабьте манжету и спокойно подождите около 5 секунд, прежде чем начинать забор крови.
2.4 Процесс забора крови не должен быть слишком быстрым, и следует избегать возможного повреждения эритроцитов из-за силы сдвига. Для этого лучше использовать ланцет с внутренним диаметром кончика (лучше использовать иглу выше 7 калибра). Не рекомендуется прилагать слишком большое усилие во время забора крови, чтобы избежать аномальной силы сдвига при прохождении крови через иглу.
2.2.5 Смешивание образца: После сбора крови отвинтите инъекционную иглу и медленно введите кровь в пробирку вдоль стенок пробирки, затем, удерживая пробирку за середину, потрите или проведите ею круговыми движениями по столу, чтобы кровь полностью смешалась с антикоагулянтом.
Чтобы избежать образования тромбов, следует избегать интенсивного встряхивания, чтобы предотвратить гемолиз.
3. Подготовка плазмы
Для приготовления плазмы используются стандартные клинические методы: центрифугирование при интенсивности около 2300×g в течение 30 минут, после чего извлекается верхний слой крови (пульпа) для измерения вязкости плазмы.
4. Размещение образцов
4.1 Температура хранения: образцы нельзя хранить при температуре ниже 0 °C. Замораживание повлияет на физиологическое состояние крови.
Состояние и реологические свойства. Поэтому образцы крови обычно хранят при комнатной температуре (15–25 °C).
4.2 Время подготовки образца: Образец обычно тестируют в течение 4 часов при комнатной температуре, но если кровь берут сразу, то есть если тест проводится немедленно, результат будет низким. Поэтому рекомендуется дать образцу постоять 20 минут после взятия крови.
4.3 Образцы нельзя замораживать и хранить при температуре ниже 0°C. Если образцы крови необходимо хранить в течение длительного времени при особых условиях, их следует пометить как «Поместить в холодильник при 4°C», при этом время хранения обычно не превышает 12 часов. Перед анализом образцы следует надлежащим образом хранить, хорошо встряхнуть, а условия хранения должны быть указаны в отчете о результатах.
Визитная карточка
Китайский WeChat