Analisis reologi darah otomatis SA-6900 mengadopsi mode pengukuran tipe kerucut/pelat. Produk ini memberikan tekanan terkontrol pada cairan yang akan diukur melalui motor torsi inersia rendah. Poros penggerak dipertahankan pada posisi tengah oleh bantalan levitasi magnetik resistansi rendah, yang mentransfer tekanan yang diberikan ke cairan yang akan diukur dan kepala pengukurannya bertipe kerucut-pelat. Seluruh pengukuran dikontrol secara otomatis oleh komputer. Laju geser dapat diatur secara acak dalam rentang (1～200) s-1, dan dapat menelusuri kurva dua dimensi untuk laju geser dan viskositas secara real-time. Prinsip pengukuran didasarkan pada Teorema Viskositas Newton.
| Model | SA-6900 |
| Prinsip | Darah utuh: Metode rotasi; |
| Plasma: Metode rotasi, metode kapiler | |
| Metode | Metode pelat kerucut, |
| metode kapiler | |
| Pengumpulan sinyal | Metode pelat kerucut: Teknologi subdivisi raster presisi tinggi. Metode kapiler: Teknologi pengambilan diferensial dengan fungsi pelacakan otomatis fluida. |
| Mode Kerja | Dua probe, dua pelat, dan dua metodologi bekerja secara bersamaan. |
| Fungsi | / |
| Ketepatan | ≤±1% |
| CV | CV≤1％ |
| Waktu pengujian | Darah utuh ≤ 30 detik/T, |
| plasma≤0,5 detik/T | |
| Laju geser | (1～200) detik-1 |
| Viskositas | （0～60）mPa.s |
| Tegangan geser | (0-12000) mPa |
| Volume pengambilan sampel | Darah utuh: 200-800 µl dapat disesuaikan, plasma ≤ 200 µl |
| Mekanisme | Paduan titanium, bantalan permata |
| Posisi sampel | 90 posisi sampel dengan rak tunggal |
| Saluran uji | 2 |
| Sistem cair | Pompa peristaltik pemeras ganda, probe dengan sensor cairan dan fungsi pemisahan plasma otomatis. |
| Antarmuka | RS-232/485/USB |
| Suhu | 37℃±0,1℃ |
| Kontrol | Bagan kontrol LJ dengan fungsi simpan, kueri, dan cetak; |
| Pengontrol cairan non-Newtonian asli dengan sertifikasi SFDA. | |
| Kalibrasi | Cairan Newtonian yang dikalibrasi berdasarkan viskositas cairan primer nasional; |
| Cairan non-Newtonian meraih sertifikasi penanda standar nasional oleh AQSIQ dari Tiongkok. | |
| Laporan | Membuka |
1. Pemilihan dan dosis antikoagulan
1.1 Pemilihan antikoagulan: Disarankan untuk memilih heparin sebagai antikoagulan. Oksalat atau natrium sitrat dapat menyebabkan penyusutan sel halus yang memengaruhi agregasi dan deformabilitas sel darah merah, sehingga mengakibatkan peningkatan viskositas darah, dan karenanya tidak cocok untuk digunakan.
1.1.2 Dosis antikoagulan: konsentrasi antikoagulan heparin adalah 10-20 IU/mL darah, fase padat atau fase cair konsentrasi tinggi digunakan sebagai agen antikoagulan. Jika antikoagulan cair digunakan secara langsung, efek pengencerannya pada darah harus dipertimbangkan. Uji coba harus dilakukan pada batch yang sama.
Gunakan antikoagulan yang sama dengan nomor batch yang sama.
1.3 Produksi tabung antikoagulan: jika antikoagulan fase cair digunakan, antikoagulan tersebut harus ditempatkan dalam tabung kaca kering atau botol kaca dan dikeringkan dalam oven. Setelah pengeringan, suhu pengeringan harus dikontrol agar tidak lebih dari 56°C.
Catatan: Jumlah antikoagulan tidak boleh terlalu banyak untuk meminimalkan efek pengenceran pada darah; jumlah antikoagulan juga tidak boleh terlalu sedikit, jika tidak, tidak akan ada efek antikoagulan sama sekali.
2. Pengumpulan sampel
2.1 Waktu: Umumnya, pengambilan darah sebaiknya dilakukan pada pagi hari saat perut kosong dan dalam keadaan tenang.
2.2 Lokasi: Saat mengambil darah, duduklah dan ambil darah dari vena siku bagian depan.
2.3 Persingkat waktu blok vena sebisa mungkin selama pengambilan darah. Setelah jarum ditusukkan ke pembuluh darah, segera kendurkan manset agar tenang. Sekitar 5 detik kemudian, mulailah pengambilan darah.
2.4 Proses pengambilan darah tidak boleh terlalu cepat, dan kerusakan pada sel darah merah yang disebabkan oleh gaya geser harus dihindari. Untuk itu, jarum lancet dengan diameter dalam ujung yang lebih baik (lebih baik menggunakan jarum di atas ukuran 7 gauge). Tidak disarankan untuk menarik terlalu banyak tenaga saat pengambilan darah, untuk menghindari gaya geser abnormal saat darah mengalir melalui jarum.
2.2.5 Pencampuran spesimen: Setelah darah dikumpulkan, buka jarum suntik, dan perlahan-lahan suntikkan darah ke dalam tabung reaksi di sepanjang dinding tabung reaksi, lalu pegang bagian tengah tabung reaksi dengan tangan Anda dan gosok atau geser dengan gerakan melingkar di atas meja agar darah tercampur sempurna dengan antikoagulan.
Untuk mencegah pembekuan darah, tetapi hindari pengocokan yang terlalu kuat untuk mencegah hemolisis.
3. Persiapan plasma
Persiapan plasma menggunakan metode rutin klinis, gaya sentrifugal sekitar 2300×g selama 30 menit, dan lapisan atas darah diekstraksi untuk pengukuran viskositas plasma.
4. Penempatan sampel
4.1 Suhu penyimpanan: spesimen tidak dapat disimpan di bawah 0°C. Dalam kondisi beku, hal itu akan memengaruhi keadaan fisiologis darah.
Keadaan dan sifat reologi. Oleh karena itu, sampel darah umumnya disimpan pada suhu ruangan (15°C-25°C).
4.2 Waktu penempatan: Spesimen umumnya diuji dalam waktu 4 jam pada suhu ruangan, tetapi jika darah diambil segera, yaitu jika tes dilakukan, hasil tesnya rendah. Oleh karena itu, sebaiknya spesimen didiamkan selama 20 menit setelah pengambilan darah.
4.3 Spesimen tidak dapat dibekukan dan disimpan di bawah 0°C. Jika sampel darah harus disimpan untuk jangka waktu yang lebih lama dalam keadaan khusus, sampel tersebut harus diberi label "Masukkan ke dalam lemari pendingin pada suhu 4℃", dan waktu penyimpanan umumnya tidak lebih dari 12 jam. Simpan spesimen dengan benar sebelum pengujian, kocok dengan baik, dan kondisi penyimpanan harus dicantumkan dalam laporan hasil.
Kartu nama
WeChat versi Tiongkok