L'analyseur de rhéologie sanguine automatisé SA-6900 utilise un mode de mesure cône-plan. Il applique une contrainte contrôlée au fluide à mesurer grâce à un moteur à faible couple d'inertie. L'arbre d'entraînement est maintenu en position centrale par un palier à sustentation magnétique à faible résistance, qui transmet la contrainte appliquée au fluide. La tête de mesure est de type cône-plan. L'ensemble du processus de mesure est automatisé par ordinateur. Le taux de cisaillement est paramétrable entre 1 et 200 s⁻¹, et l'analyseur trace en temps réel une courbe bidimensionnelle du taux de cisaillement et de la viscosité. Le principe de mesure repose sur le théorème de viscosité de Newton.
| Modèle | SA-6900 |
| Principe | Sang total : Méthode de rotation ; |
| Plasma : méthode de rotation, méthode capillaire | |
| Méthode | Méthode du cône-plan, |
| méthode capillaire | |
| Collecte de signaux | Méthode des plaques coniques : Technologie de subdivision raster haute précision. Méthode capillaire : Technologie de capture différentielle avec fonction de suivi automatique des fluides. |
| Mode de fonctionnement | Deux sondes, deux plaques et deux méthodologies fonctionnent simultanément |
| Fonction | / |
| Précision | ≤±1% |
| CV | CV≤1% |
| Temps de test | Sang total ≤ 30 sec/T, |
| plasma≤0,5 s/T | |
| Taux de cisaillement | (1～200)s-1 |
| Viscosité | (0～60) mPa.s |
| contrainte de cisaillement | (0-12000) mPa |
| Volume d'échantillonnage | Sang total : 200 à 800 µl (ajustable), plasma ≤ 200 µl |
| Mécanisme | Alliage de titane, à rubis |
| Position de l'échantillon | 90 positions d'échantillon avec un seul rack |
| Canal de test | 2 |
| Système liquide | Pompe péristaltique à double compression, sonde avec capteur de liquide et fonction de séparation automatique du plasma |
| Interface | RS-232/485/USB |
| Température | 37℃±0,1℃ |
| Contrôle | Carte de contrôle LJ avec fonction d'enregistrement, de requête et d'impression ; |
| Contrôle original des fluides non newtoniens avec certification SFDA. | |
| Étalonnage | Fluide newtonien calibré par le liquide de viscosité primaire national ; |
| Les fluides non newtoniens obtiennent la certification de marqueur de norme nationale délivrée par l'AQSIQ de Chine. | |
| Rapport | Ouvrir |
1. Choix et dosage de l'anticoagulant
1.1 Choix de l'anticoagulant : Il est conseillé d'utiliser l'héparine comme anticoagulant. L'oxalate ou le citrate de sodium peuvent provoquer une micro-rétraction cellulaire, affectant l'agrégation et la déformabilité des globules rouges et entraînant une augmentation de la viscosité sanguine ; leur utilisation est donc déconseillée.
1.1.2 Posologie de l'anticoagulant : la concentration d'héparine est de 10 à 20 UI/mL de sang. L'anticoagulant est administré sous forme solide ou liquide à haute concentration. En cas d'utilisation directe d'un anticoagulant liquide, son effet de dilution dans le sang doit être pris en compte. Les essais doivent être réalisés sur le même lot.
Utilisez le même anticoagulant portant le même numéro de lot.
1.3 Production du tube d'anticoagulant : si un anticoagulant en phase liquide est utilisé, il doit être placé dans un tube en verre sec ou une bouteille en verre et séché dans un four. Après séchage, la température de séchage ne doit pas dépasser 56 °C.
Remarque : La quantité d'anticoagulant ne doit pas être trop importante afin de minimiser l'effet de dilution sur le sang ; la quantité d'anticoagulant ne doit pas être trop faible, sinon elle n'aura aucun effet anticoagulant.
2. Prélèvement d'échantillons
2.1 Moment : Généralement, le sang doit être prélevé tôt le matin, à jeun et dans un état de calme.
2.2 Emplacement : Lors du prélèvement sanguin, prenez une position assise et prélevez le sang au niveau de la veine antérieure du coude.
2.3 Réduisez au maximum la durée du blocage veineux lors du prélèvement sanguin. Après la ponction veineuse, desserrez immédiatement le brassard pendant environ 5 secondes avant de commencer le prélèvement.
2.4 Le prélèvement sanguin ne doit pas être trop rapide afin d'éviter d'endommager les globules rouges par cisaillement. Pour cela, il est préférable d'utiliser une lancette dont le diamètre interne de l'extrémité est important (une aiguille de calibre supérieur à 7 G est recommandée). Il est déconseillé d'exercer une pression excessive lors du prélèvement afin d'éviter un cisaillement anormal du sang lors de son passage dans l'aiguille.
2.2.5 Mélange de l'échantillon : Une fois le sang prélevé, dévissez l'aiguille d'injection et injectez lentement le sang dans le tube à essai le long de la paroi du tube à essai, puis tenez le milieu du tube à essai avec votre main et frottez-le ou faites-le glisser en un mouvement circulaire sur la table pour que le sang soit complètement mélangé avec l'anticoagulant.
Pour éviter la formation de caillots sanguins, mais évitez les secousses vigoureuses pour éviter l'hémolyse.
3. Préparation du plasma
La préparation du plasma adopte des méthodes de routine clinique, la force centrifuge est d'environ 2300×g pendant 30 minutes, et la couche supérieure de sang est extraite Pulp, pour la mesure de la viscosité du plasma.
4. Placement des échantillons
4.1 Température de stockage : les échantillons ne doivent pas être conservés à une température inférieure à 0 °C. La congélation altère l’état physiologique du sang.
État et propriétés rhéologiques. Par conséquent, les échantillons de sang sont généralement conservés à température ambiante (15 °C-25 °C).
4.2 Délai de préparation : L’échantillon est généralement analysé dans les 4 heures suivant le prélèvement à température ambiante. Cependant, si le prélèvement sanguin est effectué immédiatement, le résultat du test peut être faible. Il est donc recommandé de laisser reposer l’échantillon pendant 20 minutes après le prélèvement.
4.3 Les échantillons ne doivent pas être congelés ni conservés à une température inférieure à 0 °C. Lorsque des échantillons de sang doivent être conservés plus longtemps dans des circonstances particulières, ils doivent être étiquetés comme tels. Il convient de les placer au réfrigérateur à 4 °C pendant une durée maximale de 12 heures. Les échantillons doivent être conservés dans des conditions adéquates avant l'analyse, bien agités, et les conditions de conservation doivent être indiquées dans le rapport de résultats.
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