El analizador automático de reología sanguínea SA-6900 utiliza un modo de medición de cono-placa. El producto aplica una tensión controlada al fluido a medir mediante un motor de bajo par inercial. El eje de transmisión se mantiene en posición central mediante un cojinete de levitación magnética de baja resistencia, que transfiere la tensión aplicada al fluido a medir y cuyo cabezal de medición es de cono-placa. La medición se controla automáticamente por computadora. La velocidad de corte se puede ajustar aleatoriamente en un rango de (1 a 200) s⁻¹ y permite trazar una curva bidimensional de velocidad de corte y viscosidad en tiempo real. El principio de medición se basa en el teorema de viscosidad de Newton.

| Modelo | SA-6900 |
| Principio | Sangre entera: Método de rotación; |
| Plasma: método de rotación, método capilar | |
| Método | Método de placa cónica, |
| método capilar | |
| Recopilación de señales | Método de placa cónica: Tecnología de subdivisión de trama de alta precisión. Método capilar: Tecnología de captura diferencial con función de seguimiento automático de fluidos. |
| Modo de trabajo | Sondas duales, placas duales y metodologías duales trabajan simultáneamente |
| Función | / |
| Exactitud | ≤±1% |
| CV | CV≤1% |
| Tiempo de prueba | Sangre completa ≤30 seg/T, |
| plasma≤0,5 s/T | |
| Velocidad de corte | (1~200)s-1 |
| Viscosidad | (0~60) mPa.s |
| Esfuerzo cortante | (0-12000) mPa |
| Volumen de muestreo | Sangre completa: 200-800 ul ajustable, plasma ≤ 200 ul |
| Mecanismo | Aleación de titanio, cojinete de joya |
| Posición de muestra | Posición para 90 muestras con un solo rack |
| Canal de prueba | 2 |
| Sistema líquido | Bomba peristáltica de doble compresión, sonda con sensor de líquido y función de separación automática de plasma. |
| Interfaz | RS-232/485/USB |
| Temperatura | 37℃±0,1℃ |
| Control | Gráfico de control LJ con función de guardar, consultar e imprimir; |
| Control de fluidos no newtoniano original con certificación SFDA. | |
| Calibración | Fluido newtoniano calibrado por viscosidad primaria líquida nacional; |
| El fluido no newtoniano obtiene la certificación de marcador estándar nacional por parte de AQSIQ de China. | |
| Informe | Abierto |
1. Selección y dosificación del anticoagulante
1.1 Selección del anticoagulante: Se recomienda usar heparina como anticoagulante. El oxalato o el citrato de sodio pueden causar una contracción celular fina que afecta la agregación y la deformabilidad de los glóbulos rojos, lo que resulta en un aumento de la viscosidad sanguínea, por lo que no es adecuado.
1.1.2 Dosis de anticoagulante: La concentración de anticoagulante de heparina es de 10-20 UI/ml de sangre. Se utiliza fase sólida o fase líquida de alta concentración como agente anticoagulante. Si se utiliza anticoagulante líquido directamente, se debe considerar su efecto diluyente en la sangre. Se debe realizar el mismo lote de ensayos.
Utilice el mismo anticoagulante con el mismo número de lote.
1.3 Producción de tubo anticoagulante: si se utiliza anticoagulante en fase líquida, debe colocarse en un tubo de vidrio seco o en una botella de vidrio y secarse en un horno. Después del secado, la temperatura de secado debe controlarse a no más de 56 °C.
Nota: La cantidad de anticoagulante no debe ser demasiado grande para minimizar el efecto de dilución en la sangre; la cantidad de anticoagulante no debe ser demasiado pequeña, de lo contrario no alcanzará ningún efecto anticoagulante.

2. Recogida de muestras
2.1 Hora: Generalmente, la sangre debe recolectarse temprano en la mañana con el estómago vacío y en estado de tranquilidad.
2.2 Ubicación: Al momento de extraer sangre, siéntese y extraiga la sangre de la vena anterior del codo.
2.3 Acorte al máximo el tiempo de bloqueo venoso durante la extracción de sangre. Tras la punción de la aguja en el vaso sanguíneo, afloje inmediatamente el manguito para que no se mueva. La extracción de sangre comenzará en unos 5 segundos.
2.4 El proceso de extracción de sangre no debe ser demasiado rápido y debe evitarse el posible daño a los glóbulos rojos causado por la fuerza de cizallamiento. Para ello, es recomendable usar una lanceta con un diámetro interior de la punta mayor que 7 (es recomendable usar una aguja de calibre 7). No se recomienda aplicar demasiada fuerza durante la extracción para evitar una fuerza de cizallamiento anormal al fluir la sangre a través de la aguja.
2.2.5 Mezcla de la muestra: Después de recolectar la sangre, desenrosque la aguja de inyección e inyecte lentamente la sangre en el tubo de ensayo a lo largo de la pared del tubo de ensayo, y luego sostenga el medio del tubo de ensayo con la mano y frótelo o deslícelo con un movimiento circular sobre la mesa para que la sangre se mezcle completamente con el anticoagulante.
Para evitar la coagulación de la sangre, pero evite agitarla vigorosamente para evitar la hemólisis.
3.Preparación del plasma
La preparación del plasma adopta métodos de rutina clínica, la fuerza centrífuga es de aproximadamente 2300 × g durante 30 minutos y se extrae la capa superior de sangre Pulpa, para la medición de la viscosidad del plasma.
4. Colocación de la muestra
4.1 Temperatura de almacenamiento: Las muestras no pueden almacenarse a menos de 0 °C. La congelación puede afectar el estado fisiológico de la sangre.
Estado y propiedades reológicas. Por lo tanto, las muestras de sangre generalmente se almacenan a temperatura ambiente (15 °C-25 °C).
4.2 Tiempo de toma: La muestra generalmente se analiza en un plazo de 4 horas a temperatura ambiente, pero si la sangre se extrae inmediatamente, es decir, si se realiza la prueba, el resultado es bajo. Por lo tanto, es conveniente dejar reposar la prueba durante 20 minutos después de la toma de sangre.
4.3 Las muestras no pueden congelarse ni almacenarse a menos de 0 °C. Cuando las muestras de sangre deban almacenarse durante un período prolongado en circunstancias especiales, deben marcarse como "Conservarlas en el refrigerador a 4 °C". El tiempo de almacenamiento no suele superar las 12 horas. Conserve las muestras adecuadamente antes de la prueba. Agítelas bien. Las condiciones de almacenamiento deben indicarse en el informe de resultados.

